Reabilitação diafragmática de ratos pós-imobilização com terapia aquática

Authors

  • Vânia Marilande Ceccatto Universidade Estadual do Ceará-UECE

DOI:

https://doi.org/10.33233/fb.v13i6.577

Abstract

A imobilização é um processo que acomete diversos elementos corporais, incluindo o balanço proteico entre sí­ntese e degradação, decorrentes da atrofia. A terapia aquática é uma atividade que favorece o desenvolvimento muscular e pode ser utilizada como mecanismo de recuperação funcional. O objetivo foi verificar se existe alteração na quantidade de proteí­nas no músculo respiratório de ratos após imobilização de pata, recuperados por terapia aquática. Foram utilizadas 20 ratas Wistar fêmeas com ± 8 semanas divididas em: Controle (C), Imobilizado (I), Terapia aquática (TA) e Terapia Aquática pós Imobilização (TAI). A imobilização ocorreu por duas semanas, envolvendo o tronco e o membro inferior direito. Os animais foram anestesiados (ketamina/xilasina) e sacrificados para a retirada do diafragma. A terapia aquática ocorreu por três semanas, seis dias por semana iniciando com 2 minutos com acréscimo de dois minutos por dia chegando í  duração de 36 minutos no último dia. Para a avaliação muscular foi realizada a dosagem de proteí­nas musculares, pelo método de Bradford (1976), e de nitrito muscular, relacionado ao ciclo de degradação proteica, por meio do Reagente de Griess. Para a análise estatí­stica utilizou-se Anova One-Way, com post hoc de Tukey e teste de correlação de Pearson, com significância de p < 0,05. Os resultados foram expressos em média (±) erro padrão. Na dosagem de proteí­nas obtiveram-se os seguintes valores: de 47,63 ± 7,016 para o C, 29,80 ± 3,326 para o I, 68,69 ± 1,661 para o TA e 39,53 ± 4,004 para o TAI, de modo que houve diferença estatí­stica (p < 0,05) entre os grupos C x I, C x TA, I x TA e TA x TAI. No que diz respeito í  dosagem de nitrito, os achados foram de 0,5004 ± 0,09548 para o C, 1,210 ± 0,1503 para o I, 0,4371 ± 0,07535 para o TA e 0,7288 ± 0,1153 para o TAI, de forma que houve diferença estatí­stica (p < 0,05) entre os grupos C x I, I x TA e I x TAI. Houve correlação entre proteí­na e nitrito (p < 0,0001) e esta é negativa (-0,852). Os animais do grupo TAI apresentaram normalização no conteúdo e degradação de proteí­nas em relação ao C. Fato evidenciado pela igualdade do quantitativo das proteí­nas e de seu produto de degradação (nitrito).

Palavras-chave: músculo, ratos, imobilização.

Author Biography

Vânia Marilande Ceccatto, Universidade Estadual do Ceará-UECE

Laboratório de Bioquí­mica e Expressão Gênica da Universidade Estadual do Ceará-UECE

References

Caierão QM, Teodori RM, Minamoto VB. A influência da imobilização sobre o tecido conjuntivo muscular: uma revisão. Fisioter Mov 2007;20(3):87-92.

Appell HJ. Muscular atrophy following immobilization: a review. J Sports Med 1990;10(1):42-58.

Coutinho EL, Gomes ARS, França CN, Oishi J, Salvini TF. Effect of passive stretching on the immobilized soleus muscle fiber morphology. Braz J Med Biol Res 2004;37(12):1853-61.

Williams PE, Goldspink G. Connective tissue changes in immobilized muscle. J Anat 1984;138(Pt 2):343-50.

Ferreira R, Neuparth MJ, Ascensão A, Magalhães J, Duarte J, Amado F. Atrofia muscular esquelética. Modelos experimentais, manifestações teciduais e fisiopatologia. Revista Portuguesa de Ciências do Desporto 2004;4(3):94-111.

Goldberg A. Influence of insulin and contractile activity on muscle size and protein balance. Diabetes 1979;28(Suppl 1):18-24.

Wasserman DH, Vranic M. Interaction between insulin and counter-regulatory hormones in control of substrate utilization in health and diabetes during exercise. Diabetes Metab Rev 1986;1:359-84.

Carson JA. The regulation of gene expression in hypertrophing skeletal muscle. Exerc Sport Sci Rev 1997; 25:301-20.

Booth FW. Effect of immobilization on skeletal muscle. J Appl Physiol 1982;52(2):1113-8.

Falempin M, Mounier Y. Muscle atrophy associated with microgravity in rat: basic data for countermeasures. Acta Astronáutica 1998;42:489-502.

Machida S, Booth FW. Regrowth of skeletal muscle atrophied from inactivity. Méd Sci. Sports Exerc 2004;36(1):52-59.

Hortobágyi T, Dempsey L, Fraser D, Zheng D, Hamilton G, Lambert J, et al. Changes in muscle strength, muscle fibre size and myofibrillar gene expression after immobilization and retraining in humans. J Physiol 2000;524(1):293-304.

Norman TL, Bradley-Popovich G, Clovis N, Cutlip RG, Bryner RW. Aerobic exercise as a countermeasure for microgravity-induced bone loss and muscle atrophy in a rat hind limb suspension model. Aviat Space Environ Med 2000;71:593-8.

Rocha MND. Propriedades mecânicas do músculo esquelético de ratas wistar pós-imobilização e exercício físico em esteira [Dissertação]. São Paulo: Universidade de São Paulo; 2006.

Booth FW, Kelso JR. Production of rat muscle atrophy by cast fixation. J Appl Physiol 1973;34(3):404-6.

Itai Y, Kariya Y, Hoshino Y. Morphological changes in rat hind limb muscle fibers during recovery from disuse atrophy. Acta Physiol Scand 2004;181:217-24.

Santos-Júnior FFU, Alves JSM, Machado AAN, Carlos PS, Ferraz ASM, Barbosa R, et al. Alterações morfométricas em músculo respiratório de ratos submetidos à imobilização de pata. Rev Bras Med Esp 2010;16(3):215-8.

Frateschi MMEBJ. Efeitos da imobilização e remobilização em algumas propriedades mecânicas do osso [Dissertação]. Ribeirão Preto: Escola de Engenharia de São Carlos, Faculdade de Medicina de Ribeirão Preto e Instituto de química de São Carlo- Universidade de São Paulo; 2002.

Bradford MM. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of proteins utilizing the principle of protein-dye binding. Anal Biochem 1976;7(72):248-54.

Dittmier DK, Teasell R. Complications of Immobilization and bed rest. Part 1: Musculoskeletal and cardiovascular complications. Can Fam Physician 1993;3:1428-37.

Carvalho LC, Shimano AC, Picado CHF. Estimulação elétrica neuromuscular e o alongamento passivo manual na recuperação das propriedades mecânicas do músculo gastrocnêmio imobilizado. Acta Ortop Bras 2008;16(3):161-4.

Zhang P, Chen X, Fan M. Signaling mechanisms involved in disuse muscle atrophy. Med Hypotheses 2007;69:310-21.

Candeloro JM, Caromano FA. Efeitos de um programa de hidroterapia na flexibilidade e na força muscular de idosas. Rev Bras Fisioter 2007;11(4):303-9.

Caromano FA, Nowotny JP. Princípios físicos que fundamentam a hidroterapia. Fisioter Bras 2002;3(6):1-9.

Caromano FA, Filho MRFT, Candeloro JM. Efeitos fisiológicos da imersão e do exercício na água. Fisioter Bras 2003;4(1):1-5.

Rocha WA, Gobbi GA, Araujo VF, Santuzzi CHI, Coutinho GCI, Nogueira BVI, et al. Washington Luiz Silva Gonçalves et al. Alterações morfofuncionais musculares em resposta ao alongamento passivo em modelo animal de imobilização prolongada de membros posterior. Rev Bras Med Esporte 2010;16(6):450-54.

Aquino CF, Viana SO, Fonseca ST. Comportamento biomecânico e resposta dos tecidos biológicos ao estresse e à imobilização. Fisioter Mov 2005;18(2):35-43.

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Published

2016-11-27

Issue

Vol. 13 No. 6 (2012): Fisioterapia Brasil v13n6

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